Експериментальне дослідження інтраочеревинної інстиляції рекомбінантного людського гранулоцитарного колонієстимулювального фактору для лікування гострого перитоніту

Автор(и)

  • А.І. Шурма аспірант кафедри хірургії № 1, Буковинський державний медичний університет, м. Чернівці, Україна
  • Ф.В. Гринчук професор кафедри хірургії № 1, Буковинський державний медичний університет м. Чернівці, Україна

DOI:

https://doi.org/10.24061/2413-0737.XXVI.4.104.2022.8

Ключові слова:

гострий перитоніт; санація; очеревина; гранулоцитарний колонієстимулювальний фактор

Анотація

Мета роботи. В експерименті дослідити можливість інтраочеревинного застосування рекомбінантного людського гранулоцитарного колонієстимулювального фактору (Г-КСФ) для лікування гострого перитоніту.
Матеріал і методи. Матеріалом дослідження стали 60 білих нелінійних щурів. ГП моделювали інтраочеревинною пункцією 20% суміші автокалу. Через 12 год виконували лапаротомію і санацію очеревинної порожнини. У 30 тварин (контроль) використали розчин декаметоксину. У досліді після санації в очеревинну порожнину уводили розчин Г-КСФ на NaCl у дозі 0,1 млн ОД на 100 г маси. Через 6, 12, 24 і 48 год виконували релапаротомію і забирали парієтальну очеревину для дослідження. На цифрових копіях гістологічних препаратів підраховували кількість клітин.
Результати. Через 6 год: у контролі кількість поліморфноядерних лейкоцитів (ПЯЛ) – 2,7±0,39, у досліді – 3,9±0,38 (р<0,05); у контролі кількість лімфоцитів (ЛЦ) – 0,2±0,13, у досліді – 0,7±0,33 (р<0,05). Через 12 год: у
контролі кількість ПЯЛ – 3,1±0,62, у досліді – 4,6±0,45 (р<0,05); у контролі кількість ЛЦ – 0-1 у полі зору, у досліді – 1,8±0,33; у досліді кількість фібробластів (ФБ) – 0,9±0,27. Через 24 год: у контролі кількість ПЯЛ –
3,3±0,39, у досліді – 1,3±0,33; у контролі кількість ЛЦ – 1,8±0,41, у досліді – 2,3±0,33; у контролі кількість ФБ – 0,4±0,16, у досліді – 1,6±0,31 (р<0,01); у контролі кількість макрофагів (МФ) – 0,4±0,16, у досліді – 0,7±0,21; у досліді кількість плазмоцитів (ПЦ) – 1,1±0,28. Через 48 год: у контролі кількість ПЯЛ – 2,1±0,27, у досліді – 1,4±0,31 (р<0,05); у контролі кількість ЛЦ – 2,2±0,29, у досліді – 3,3±0,37 (р<0,05); у контролі кількість ФБ – 1,9±0,34, у досліді – 2,9±0,23 (р<0,05); у контролі кількість макрофагів (МФ) – 2,0±0,36, у досліді – 3,4±0,22 (р<0,01); у контролі кількість ПЦ – 0,9±0,28, у досліді – 3,1±0,27 (р<0,01).
Висновки. У тварин з моделями ГП після проведення санації очеревинної порожнини розчином декаметоксину спостерігаються ознаки затримки місцевої відповіді імунокомпетентних клітин на 12-24 год, процесів регенерації на 24-48 год і сповільнення регресу запального процесу в очеревині. У тварин, яким після санації використали внутрішньоочеревинну інстиляцію Г-КСФ, спостерігаються ознаки раннього активування місцевої реакції імунних клітин та процесів регенерації, разом із прискоренням регресу запалення. Результати експериментів вказують, що внутрішньоочеревинну інстиляцію Г-КСФ можна використати за клінічних умов для лікування хворих на гострий перитонит.

Посилання

Dziubanovs'kyi I, Benedykt V. Hostryi poshyrenyi perytonit. Laparostomiia chy prohramovana relaparotomiia? [Acute disseminated peritonitis. Laparostomy or programmed relaparotomy?]. Klinichna anatomiia ta operatyvna khirurhiia. 2014;1(13):53-5. DOI: 10.24061/1727-0847.13.1.2014.12. (in Ukrainian).

Sartelli M, Chichom-Mefire А, Labricciosa FM, Hardcastle T, Abu-Zidan FM, Adesunkanmi AK, et al. The management of intra-abdominal infections from a global perspective: 2017 WSES guidelines for management of intra-abdominal infections. World J Emerg Surg. 2017;12:29. DOI:10.1186/s13017-017-0141-6.

Zhou Q, Shi Q, Yu X, Wang Z, Zhang J, Yang N, et al. Effectiveness of intraoperative peritoneal lavage (IOPL) with saline in patient with intra-abdominal infections: a systematic review and meta-analysis protocol. BMJ Open. 2020 Jul 19;10(7):e036273. DOI: 10.1136/bmjopen-2019-036273.

Ross JT, Matthay MA, Harris HW. Secondary peritonitis: principles of diagnosis and intervention. BMJ. 2018;361:1407. DOI: 10.1136/bmj.k1407.

Mazuski JE, Tessier JM, May AK, Sawyer RG, Nadler EP, Rosengart MR, et al. The Surgical Infection Society Revised Guidelines on the Management of Intra-Abdominal Infection. Surg Infect (Larchmt). 2017;18(1):1-76. DOI: 10.1089/sur.2016.261.

Hecker A, Reichert M, Reuß CJ, Schmoch T, Riedel J, Schneck E, et al. Intra-abdominal sepsis: new definitions and current clinical standards. Langenbecks Arch Surg. 2019;404(3):257-71. DOI: 10.1007/s00423-019-01752-7.

Wang Y, Guo J, Xiong T, Wang F, Kou G, Ning H. The quality assessment of intraabdominal infection guidelines consensuses in 2 decades: which are better and any changes? Medicine (Baltimore). 2020;99(50):23643. DOI: 10.1097/MD.0000000000023643.

Boiko VV, Lohachov VK, Tymchenko MIe. Zastosuvannia rozchynu dekametoksynu v likuvanni rozpovsiudzhenykh form perytonitu [Use of decamethoxine solution in the treatment of widespread forms of peritonitis]. Kharkivs'ka khirurhichna shkola. 2013;3(1):88-92. (in Ukrainian).

Hesami M, Alipour H, Nikoupour Daylami H, Alipour B, Bazargan-Hejazi S, Ahmadi A. Irrigation of abdomen with imipenem solution decreases surgical site infections in patients with perforated appendicitis: a randomized clinical trial. Iran Red Crescent Med J. 2014;16(4):12732. DOI: 10.5812/ircmj.12732.

Moroz PV. Novi metody sanatsii ocherevynnoi porozhnyny pry rozpovsiudzhenykh formakh perytonitu [New methods of rehabilitation of the peritoneal cavity in widespread forms of peritonitis]. XXIV Congress of Surgeons of Ukraine. Coll. Sciences of works. Wedge surgery. 2018. p. 258-59.

Feleshtyns'kyi YaP, Demkovych OP, Diadyk OO, Smischuk VV. Eksperymental'no-morfolohichne obgruntuvannia vykorystannia antyseptychnoho helevoho rozchynu pry zahal'nomu perytoniti [Experimental and morphological justification of the use of an antiseptic gel solution in general peritonitis]. Khirurhiia Ukrainy. 2019;3:19-25. (in Ukrainian).

Burini G, Cianci MC, Coccetta M, Spizzirri A, Di Saverio S, Coletta R, et al. Aspiration versus peritoneal lavage in appendicitis: a meta-analysis. World J Emerg Surg. 2021 Sep 6;16(1):44. DOI: 10.1186/s13017-021-00391-y.

Gemici E, Bozkurt M, Sürek A, Seyhun C, Güneş ME. Laparoscopic lavage versus aspiration alone in perforated acute appendicitis: a prospective randomized controlled study. Surg Laparosc Endosc Percutan Tech. 2020 Feb;30(1):14-7. DOI: 10.1097/SLE.0000000000000745.

Capobianco A, Cottone L, Monno A, Manfredi AA, Rovere-Querini P. The peritoneum: healing, immunity, and diseases. 2017;243(2):137-47. DOI: 10.1002/path.4942.

Ağca B, İşcan A, Polat E, Memişoğlu K. The antibacterial effect of peritoneal fluid in experimental peritonitis. Ulus Travma Acil Cerrahi Derg. 2018;24(5):387-90. DOI: 10.5505/tjtes.2018.10452.

Granslo HN, Aarag Fredheim EG, Esaiassen E, Christophersen L, Jensen PØ, Mollnes TE, et al. The synthetic antimicrobial peptide LTX21 induces inflammatory responses in a human whole blood model and a murine peritoneum model. APMIS. 2019;127(6):475-83. DOI: 10.1111/apm.12946.

Hrynchuk AF, Davydenko IS, Hrynchuk FV, Polians'kyi IIu. Eksperymental'ne obgruntuvannia intraocherevynnoho zastosuvannia interferonu α2b dlia likuvannia hostroho perytonitu [Experimental justification of intraperitoneal use of interferon α2b for the treatment of acute peritonitis]. Shpytal'na khirurhiia. Zhurnal imeni L. Ya. Koval'chuka. 2020;1:46-50. DOI: https://doi.org/10.11603/2414-4533.2020.1.10736.

Lee M, Kim K, Jo Y, Lee J, Hwang J. Dose-dependent mortality and organ injury in a cecal slurry peritonitis model. J Surg Res. 2016;206(2):427-34. DOI: 10.1016/j.jss.2016.08.054.

##submission.downloads##

Опубліковано

2022-11-24

Номер

Розділ

ОРИГІНАЛЬНІ ДОСЛІДЖЕННЯ