МОРФО-ФУНКЦІОНАЛЬНІ ВЛАСТИВОСТІ ЕРИТРОЦИТІВ ЯК МАРКЕР ПРОГРЕСУВАННЯ УРАЖЕНЬ НИРОК У ХВОРИХ, ЯКІ ПЕРЕНЕСЛИ КОРОНАВІРУСНУ ХВОРОБУ

Л.О. Зуб; Б.В. Горбан; І.О. Буздуган

doi:10.24061/2413-0737.28.1.109.2024.17

Автор(и)

Л.О. Зуб д-р мед. наук, професор кафедри внутрішньої медицини Буковинського державного медичного університету, Україна
Б.В. Горбан аспірант кафедри внутрішньої медицини Буковинського державного медичного університету, лікар, Україна
І.О. Буздуган канд. мед. наук, асистент кафедри внутрішньої медицини БДМУ, Україна

DOI:

https://doi.org/10.24061/2413-0737.28.1.109.2024.17

Ключові слова:

COVID-19; ураження нирок; морфо-функціональні зміни еритроцитів

Анотація

Патологія морфо-функціонального стану еритроцитів впливає не тільки на реологічні властивості крові, а ще й на різноманітні регуляторні процеси, що забезпечують мікроциркуляцію, зокрема, і в нирках. Зміни морфо-функціонального стану еритроцитів спричиняють патологічний вплив на мембрани та рецептори клітин нирок, що призводить до негативних розладів їх життєдіяльності та функціонування.
Мета. Дослідити морфо-функціональний стан еритроцитів у хворих з ураженням нирок, що перенесли COVID‑19.
Матеріал і методи. Було обстежено 75 хворих у віці 45-65 років з ураженням нирок, які перенесли COVID середньої тяжкості 8-12 місяців тому. Усі пацієнти вже мали ХХН 1-2 ст. Було сформовано групи дослідження та групи контролю (пацієнти з відповідною нозологією, які не хворіли на COVID): І - гломерулонефрит (ХГН); ІІ –пієлонефрит (ХПН); ІІІ – діабетична нефропатія 4 ст. (ДН). Всі пацієнти мали протокольне дослідження нефрологічних пацієнтів, а також ми дослідили у них морфо-функціональні властивості еритроцитів (індекс деформабельності еритроцитів (ІДЕ), відносну в’язкість еритроцитарної суспензії (ВВЕС), пероксидний гемоліз еритроцитів (ПГЕ) за допомогою фільтраційних методів.
Результати дослідження. Зміни морфо-функціональних властивостей еритроцитів можуть свідчити про прогресуючий перебіг захворювань нирок у хворих, які перенесли COVID. Це проявилося зменшенням індексу деформабельності еритроцитів, більш як на 40% у хворих на ХГН та удвічі у хворих з ДН, а також вірогідним підвищенням відносної в’язкості еритроцитарної суспензії, що було в 2 рази вищим у групі з ХГН та у 3 рази вищим у групі з ДН за відповідні показники у групі з ХПН. Виявлено зворотню
кореляційну залежність між добовою протеїнурією та ІДЕ у хворих з ХХН після COVID (r=-0,59) (р=0,041), а також відповідну пряму залежність між ПГЕ та добовою протеїнурією (r=0,68) (р=0,038) та між ВВЕС з добовою протеїнурією (r=0,76) (р=0,035).
Висновки. Зміни морфо-функціональних властивостей еритроцитів були глибшими у хворих на ДН та ХГН після перенесеного COVID, ніж у пацієнтів з ХПН. Виявлено кореляцію між показниками морфо-функціональних властивостей еритроцитів та добовою протеїнурією. Показники морфо-функціональних властивостей еритроцитів – ВВЕС, ІДЕ та ПГЕ можуть бути маркерами прогресування ХХН у хворих, які перенесли COVID середньої важкості.

Посилання

Akentieva MS, Bezruk TO. Indeks deformabel'nosti erytrotsytiv u khvorykh na diabetychnu nefropatiiu III-IV stadii z suputnim ozhyrinniam [Index of erythrocyte deformability in patients with diabetic nephropathy stage III-IV with concomitant obesity]. International Journal of Endocrinology (Ukraine). 2013;6:89-90. (in Ukrainian).

Korol T. Klitynni mekhanizmy erytrodierezu [Cellular mechanisms of erythrodieresis]. Visnyk of the Lviv University. Series Biology. 2020;82:14-35. DOI: 10.30970/vlubs.2020.82.02. (in Ukrainian).

Moskaliuk II. Oksydantno-protyoksydantnyi homeostaz ta morfo-funktsionalni vlastyvosti erytrotsytiv na tli zastosuvannia meteospazmilu ta karvedylolu u khvorykh na toksychni formy zobu iz syndromom podraznenoho kyshkivnyku [The oxidant-antyoxidant homeostasis and morpho-functional properties of erythrocytes in the use of meteospasmil and carvedilol in patients with toxic forms of goiter with irritable bowel syndrome]. Problems of ecological and medical genetics and clinical immunology. 2013;2:147-55. (in Ukrainian).

Chávez-Valencia V, Orizaga-de-la-Cruz C, Lagunas-Rangel FA. Acute Kidney Injury in COVID-19 Patients: Pathogenesis,

Clinical Characteristics, Therapy, and Mortality. Diseases [Internet]. 2022[cited 2024 Jan 28];10(3):53. Available from:

https://www.ncbi.nlm.nih.gov/pmc/articles/PMC9397016/pdf/diseases-10-00053.pdf DOI: 10.3390/diseases10030053.

Arandjelovic S, Ravichandran KS. Phagocytosis of apoptotic cells in homeostasis. Nat Immunol. 2015;16(9):907-17. DOI:

1038/ni.3253.

Arashiki N, Kimata N, Manno S, Mohandas N, Takakuwa Y. Membrane peroxidation and methemoglobin formation are both necessary for band 3 clustering: mechanistic insights into human erythrocyte senescence. Biochemistry. 2013;52(34):5760-9. DOI: 10.1021/bi400405p.

Catan A, Turpina C, Diotela N, Patche J, Guerin-Dubourg A, Debussche X, et al. Aging and glycation promote erythrocyte

phagocytosis by human endothelial cells: Potential impact in atherothrombosis under diabetic conditions. Atherosclerosis. 2019;291:87-98. DOI: 10.1016/j.atherosclerosis.2019.10.015.

Ciana A, Achilli C, Gaur A, Minetti G. Membrane remodelling and vesicle formation during ageing of human red blood cells. Cell Physiol Biochem. 2017;42(3):1127-38. DOI: 10.1159/000478768.

Ciana A, Achilli C, Minetti G. Spectrin and other membrane-skeletal components in human red blood cells of different age. Cell Physiol Biochem. 2017;42(3):1139-52. DOI: 10.1159/000478769.

Ensinck MA, Brajovich MEL, Borrás SEG, Cotorruelo CM, Biondi CS. Erythrocyte senescent markers by flow cytometry.

Open Journal of Blood Diseases. 2019;9(3):47-59. DOI: 10.4236/ojbd.2019.93006.

Gompper G, Fedosov DA. Modeling microcirculatory blood flow: current state and future perspectives. Wiley Interdiscip Rev Syst Biol Med. 2016;8(2):157-68. DOI: 10.1002/wsbm.1326.

Lanotte L, Mauer J, Mendez S, Fedosov DA, Fromental JM, Claveria V, et al. Red cells’ dynamic morphologies govern blood shear thinning under microcirculatory flow conditions. Proc Natl Acad Sci U S A. 2016;113(47):13289-94. DOI: 10.1073/pnas.1608074113.

Mairbäurl H. Neocytolysis: how to get rid of the extra erythrocytes formed by stress erythropoiesis upon descent from high altitude. Front Physiol [Internet]. 2018[cited 2024 Feb 01];9:345. Available from:

https://www.ncbi.nlm.nih.gov/pmc/articles/PMC5896414/pdf/fphys-09-00345.pdf DOI: 10.3389/fphys.2018.00345.

Melville NA. Nephrologists on Lessons Learned With Kidney Disease in CОVID-19. Medscape [Internet]. 2020[cited 2024 Jan 29]. Available from: https://www.medscape.com/viewarticle/928346?form=fpf.

Naicker S, Yang CW, Hwang SJ, Liu BC, Chen JH, Jha V. The Novel Coronavirus 2019 Epidemic and Kidneys. Kidney Int.

;97(5):824-8. DOI: 10.1016/j.kint.2020.03.001.

Pavliukovych ND. V’iazkist suspenzii erytrotsytiv u khvorykh na sertsevu nedostatnist na tli komorbidnosti [Viscosity of the erythrocyte’s suspension in patients with heart failure based on comorbidity]. Ukrainian Journal of Medicine, Biology and Sport. 2017;2(1):114-7. DOI: 10.26693/jmbs02.01.114. (in Ukrainian).

Fanelli V, Fiorentino M, Cantaluppi V, Gesualdo L, Stallone G, Ronco C, et al. Acute kidney injury in SARS-CoV-2 infected

patients. Critical Care [Internet]. 2020[cited 2024 Feb 01];24(1):144. Available from:

https://ccforum.biomedcentral.com/articles/10.1186/s13054-020-02872-z. DOI: 10.1186/s13054-020-02872-z.

Su H, Yang M, Wan C, Yi LX, Tang F, Zhu HY, et al. Renal histopathological analysis of 26 postmortem findings of patients with COVID-19 in China. Kidney Int. 2020;98(1):219-27. DOI: 10.1016/j.kint.2020.04.003.

Zhang Y, Xiao M, Zhang S, Xia P, Cao W, Jiang W, et al. Coagulopathy and antiphospholipid antibodies in patients with

Covid-19. N Engl J Med [Internet]. 2020[cited 2024 Jan 28];382(17):e38. Available from:

https://www.ncbi.nlm.nih.gov/pmc/articles/PMC7161262/pdf/NEJMc2007575.pdf. DOI: 10.1056/nejmc2007575.