ГІСТОЛОГІЧНІ ЗМІНИ В СЕЛЕЗІНЦІ ЩУРІВ У РАННІ ТЕРМІНИ ЕКСПЕРИМЕНТАЛЬНОГО СТРЕПТОЗОТОЦИН-ІНДУКОВАНОГО ЦУКРОВОГО ДІАБЕТУ

Автор(и)

  • О.Б. Ханенко аспірант кафедри дитячої хірургії з курсом клінічної анатомії та оперативної хірургії, Івано-Франківський національний медичний університет, м. Івано-Франківськ, Україна
  • Ю.І. Попович завідувач кафедри фармакології, Івано-Франківський національний медичний університет, м.Івано-Франківськ, Україна

DOI:

https://doi.org/10.24061/2413-0737.28.3.111.2024.8

Ключові слова:

цукровий діабет; селезінка; морфологічні зміни; біла пульпа; червона пульпа

Анотація

Діабет є системним захворюванням, яке впливає на різні органи та системи організму. Дослідження особливостей змін селезінки у щурів, які страждають на цукровий діабет, допомагає зрозуміти ці зміни та їх вплив на імунну функцію.
Мета дослідження – встановлення особливостей морфологічних змін структурних компонентів селезінки в ранньому періоді експериментального цукрового діабету.
Результати. Встановлено морфологічні зміни селезінки в ранньому періоді експериментального стрептозотоцинового цукрового діабету. ЦД викликали одноразовим внутрішньоочеревинним уведенням стрептозотоцину. Гістологічні дослідження селезінки проводили через 14 і 28 днів після індукції ЦД. У здорових щурів селезінка мала нормальну структуру з чітким розмежуванням червоної та білої пульпи. Морфометричні дослідження показали, що лімфатичні вузли мали діаметр (445,92±12,6) мкм і товщину маргінальної зони (76,22±5,12) мкм. Через 14 днів експериментального ЦД гістологічні препарати виявляли зменшені лімфоїдні вузлики білої пульпи діаметром (435,83±14,28) мкм і гермінативними центрами (139,97±5,74) мкм. Через 28 діб лімфоїдні вузлики ще більше зменшилися - до (392,37±10,29) мкм, а гермінативні центри – до (125,93±5,71) мкм. Ширина періартеріальної лімфоїдної муфти зменшилася до (67,91±3,62) мкм, що свідчить про ранні зміни в Т-клітинних зонах.
Висновок. У ранні терміни експериментального цукрового діабету в селезінці відзначаються значні структурні зміни, а саме відбувається зменшення розмірів лімфоїдних вузликів, гермінативних центрів і ширини різних зон селезінки, а також зниження щільності лімфоцитів. Дані зміни можуть свідчити про серйозну імунологічну дисфункцію у піддослідних щурів.

Посилання

George B, Cebioglu M, Yeghiazaryan K. Inadequate diabetic care: global figures cry for preventive measures and personalized treatment. EPMA J. 2010;1(1):13-8. doi: 10.1007/s13167-010-0006-5.

Ferlita S, Yegiazaryan A, Noori N, Lal G, Nguyen T, To K, et al. Type 2 Diabetes Mellitus and Altered Immune System Leading to Susceptibility to Pathogens, Especially Mycobacterium tuberculosis. J Сlin Med. 2019;8(12):2219. doi: 10.3390/jcm8122219.

Tang L, Wang H, Cao K, Xu C, Ma A, Zheng M, et al. Dysfunction of circulating CD3+CD56+ NKT-like cells in type 2 diabetes mellitus. Int J Med Sci. 2023;20(5):652-62. doi: 10.7150/ijms.83317.

Golden T, Simmons RA. Immune dysfunction in developmental programming of type 2 diabetes mellitus. Nat Rev Endocrinol. 2021;17(4):235-45. doi: 10.1038/s41574-020-00464-z.

Alblihd MA, Alsharif KF, Hamad AA, Ali FAZ, Hussein MT, Alhegaili AS, et al. Okra [Abelmoschus esculentus (L.) Moench] improved blood glucose and restored histopathological alterations in splenic tissues in a rat model with streptozotocin-induced type 1 diabetes through CD8+ T cells and NF-kβ expression. Front Vet Sci. 2023;10:1268968. doi: 10.3389/fvets.2023.1268968.

Ebaid H, Al-Tamimi J, Metwalli A, Allam A, Zohir K, Ajarem J, et al. Effect of STZ-induced diabetes on spleen of rats: improvement by camel whey proteins. Pakistan Journal of Zoology. 2015;47(4):1109-16.

Pernar LIM, Tavakkoli A. Anatomy and Physiology of the Spleen. Shackelford's Surgery of the Alimentary. 2019;2:1591-97. DOI: 10.1016/B978-0-323-40232-3.00136-9.

Shivanal U, Parashuram R, Dakshayani KR, Shwetha K. Morphometric study of adult human spleen in a cadaver. Indian Journal of Clinical Anatomy and Physiology. 2021;8(1):20-3. DOI: 10.18231/J.IJCAP.2021.005.

Ikpegbu E, Ibe CS, Nlebedum UC, Nnadozie O. The Spleen Morphology of the African Giant Pouch Rat (Cricetomys gambianus-Waterhouse, 1840) from Eastern Nigeria. Journal of Animal Research. 2019;9(1):13-7. DOI: 10.30954/2277-940X.01.2019.2.

Hanchang W, Wongmanee N, Yoopum S, Rojanaverawong W. Protective role of hesperidin against diabetes induced spleen damage: Mechanism associated with oxidative stress and inflammation. J Food Biochem. 2022;46(12):e14444. DOI: 10.1111/jfbc.14444.

Said HM, Abdelaziz H, Abd Elhaliem N, Elsherif Sh. A Comparative Study between Ginger and Echinacea Possible Effect on the Albino Rat Spleen of Experimentally Induced Diabetes. Egyptian Journal of Histology. 2020;43(3):763-76. DOI: 10.21608/EJH.2019.16107.1156.

Zhang J, Deng Z, Jin L, Yang C, Liu J, Song H, et al. Spleen-Derived Anti-Inflammatory Cytokine IL-10 Stimulated by Adipose Tissue-Derived Stem Cells Protects Against Type 2 Diabetes. Stem Cells Dev. 2017;26(24):1749-58. DOI: 10.1089/SCD.2017.0119.

Hashish HA, Kamal RN. Effect of curcumin on the expression of Caspase-3 and Bcl-2 in the spleen of diabetic rats. Journal of Experimental and Clinical Anatomy. 2015;14(1):18-23. DOI: 10.4103/1596-2393.158923.

Dewi AK, Rahardjo IB, Gunawan A. Perbedaan jumlah limfosit daerah pals (periarterial lymphoid sheat) antara mencit sehat dan mencit diabetes. Majalah Biomorfologi. 2014;27(1):5-8. DOI: 10.20473/MBIOM.V27I1.2014.5-8.

Cook MC, Basten A, Groth BFS. Outer periarteriolar lymphoid sheath arrest and subsequent differentiation of both naive and tolerant immunoglobulin transgenic B cells is determined by B cell receptor occupancy. J Exp Med. 1997;186(5):631-43. DOI: 10.1084/JEM.186.5.631.

Chen YG, Forsberg MH, Khaja S, Ciecko AE, Hessner MJ, Geurts AM. Gene Targeting in NOD Mouse Embryos Using Zinc-Finger Nucleases. Diabetes. 2014;63(1):68-74. doi: 10.2337/db13-0192.

Li C, Gao Q, Jiang H, Liu C, Du Y, Li L. Changes of macrophage and CD4+ T cell in inflammatory response in type 1 diabetic mice. Sci Rep. 2022;12:14929. doi: 10.1038/s41598-022-19031-9.

Berestova A, Karagezyan M, Spaska A, Sakharova T, Shorina D. Clinical and morphological changes of the spleen in COVID-19 patients with and without splenectomy. Electron J Gen Med. 2024;21(5):em602. doi: 10.29333/ejgm/14935.

Sutradhar S, Deb A, Singh SS. Melatonin attenuates diabetes-induced oxidative stress in spleen and suppression of splenocyte proliferation in laboratory mice. Arch Physiol Biochem. 2022;128(5):1401-12. doi: 10.1080/13813455.2020.1773506.

##submission.downloads##

Опубліковано

2024-11-08

Номер

Розділ

ОРИГІНАЛЬНІ ДОСЛІДЖЕННЯ