МОРФОФУНКЦІОНАЛЬНІ ЗМІНИ ШЛУНКА ПРИ ЦУКРОВОМУ ДІАБЕТІ. ОГЛЯД ЛІТЕРАТУРИ
DOI:
https://doi.org/10.24061/2413-0737.29.3.115.2025.13Ключові слова:
морфофункціональні зміни; шлунок; цукровий діабет; слизова оболонка; епітеліальні клітини; кислототвірна функціяАнотація
Ідентичність морфологічної будови щура та людини дозволяє моделювати патологічні процеси та екстраполювати їх на людcький організм, з метою розроблення корекційно-оптимізаційних стратегій запобігання деструктивним змінам та ефективних методів медикаментозного лікування патологічних станів.
Мета дослідження - огляд кейсів та сучасних наукових розробок з оцінки особливостей морфофункціональних змін шлунка статевозрілих щурів при експериментальному цукровому діабеті. У статті проаналізовано особливості морфофункціональної динаміки шлунка, які включають зміни у структурі слизової оболонки та епітеліальних клітинах, зміни рухливості шлунка та кислотної функції. У межах дослідження розглянуто провідні розробки сучасних науковців у сфері обраної проблематики. Встановлено, що серед основних морфофункціональних змін учені детермінують: зміни слизової оболонки, що проявляються в потовщенні слизової оболонки; зміни епітеліальних клітин у вигляді появи дистрофічних перебудов; зміни в кислотній функції шлунка, що знаходять вираження у зниженні секреторної активності; зміни моторики шлунка. З’ясовано, що основними причинами морфофункціональних змін шлунка при цукровому діабеті сучасні учені виокремлюють гіперглікемію, порушення метаболізму та запальні процеси. Вплив зазначених станів проявляється в ослабленні захисних механізмів організму, зниженні антиоксидантного і антимікробного захисту, що врешті призводить до порушення морфофункціонального стану. Визначено, що на тлі цукрового діабету доволі часто розвиваються ознаки діабетичного гастропарезу, що виникає через порушення моторики шлунка. Доведено, що дослідження впливу цукрового діабету на морфофункціональні зміни шлунка щурів в експериментальних умовах слугують основою для ефективного вдосконалення практичних методів медикаментозного лікування патологічних станів.
Посилання
Khanenko OB, Popovych YuI, Levchenko VA, Ivantsiv OR, Bilins'kyi II. Ushkodzhennia selezinky ta imunnoi systemy v tsilomu pry tsukrovomu diabeti (ohliad literatury) [Damage to the spleen and the immune system as a whole in diabetes mellitus (literature review)]. Problemy endokrynnoi patolohii. 2024;2:74-83. https://doi.org/10.21856/j-PEP.2024.2.10. (in Ukrainian).
Bilash SM, Pronina OM, Koptev MM. Morfolohiia shlunka schuriv pry eksperymental'nomu vvedenni kriokonservovanoi platsenty [Morphology of the stomach of rats after experimental administration of cryopreserved placenta]. Poltava: Kopir-servis; 2018. 82 p. (in Ukrainian).
Ivantsiv OR. Morfolohichni zminy endokrynotsytiv pidshlunkovoi zalozy na foni medykamentoznoho likuvannia tsukrovoho diabetu eksenatydom ta insulinom u schuriv [Morphological changes in pancreatic endocrinocytes following drug treatment of diabetes mellitus with exenatide and insulin in rats]. Morfolohiia. 2020;13(3):132-36. https://doi.org/10.26641/1997-9665.2020.3.132-136. (in Ukrainian).
Ivantsiv OR, Fedorak VM, Bilinskyi ІІ, Popovych YuI, Fedorak VV. Morphofunctional state of pancreas in rats with diabetes mellitus. Art of Medicine. 2024;1:271-77. https://doi.org/10.21802/artm.2024.1.29.271.
Andrews CN, Woo M, Buresi M, Curley M, Gupta M, Tack J, et al. Prucalopride in diabetic and connective tissue disease-related gastroparesis: Randomized placebo-controlled crossover pilot trial. Neurogastroenterol Motil. 2021;33(1):e13958. https://doi.org/10.1111/nmo.13958.
An JM, Kim E, Lee HJ, Park MH, Son DJ, Hahm KB. Dolichos lablab L. extracts as pharmanutrient for stress-related mucosal disease in rat stomach. J Clin Biochem Nutr. 2020;67(1):89-101. doi: 10.3164/jcbn.20-11.
Bhattacharyya A, Chattopadhyay R, Mitra S, Crowe SE. Oxidative stress: an essential factor in the pathogenesis of gastrointestinal mucosal diseases. Physiol Rev. 2014;94(2):329-54. doi: 10.1152/physrev.00040.2012.
Fedchenko SM, Kondaupova HIu. Mopfometpychni pokaznyky slyzovoi obolonky shlunka schupiv u postnatal'nomu ontohenezi [Morphometric parameters of the gastric mucosa of rats in postnatal ontogenesis]. Ukpains'kyi zhurnal klinichnoi ta laboratornoi medytsyny. 2013;8(3):136-38. (in Ukrainian).
Akimov OY, Mischenko AV, Kostenko VO. Influence of combined nitrate and fluoride intoxication on connective tissue disorders in rats gastric mucosa. Archives of the Balkan Medical Union. 2019;54(3):417-21.
Kostits'ka IO. Optymizatsiia kompleksnoho likuvannia morfolohichnykh proiaviv diabetychnoho hastroparezu [Optimization of complex treatment of morphological manifestations of diabetic gastroparesis]. Aktual'ni problemy suchasnoi medytsyny: Visnyk ukrains'koi medychnoi stomatolohichnoi akademii. 2016;16(4):261-66. (in Ukrainian).
Tkach SM, Pan'kiv VI, Dohotar VB, Yuzvenko VS. Diabetychnyi hastroparez: suchasni dani schodo epidemiolohii, patofiziolohii, diahnostyky ta likuvannia [Diabetic gastroparesis: current data on epidemiology, pathophysiology, diagnosis, and treatment. A literature review]. Klinichna endokrynolohiia ta endokrynna khirurhiia. 2022;3:78-86. doi: 10.30978/CEES-2022-3-78. (in Ukrainian).
Coskun ZM, Sacan O, Karatug A, Turk N, Yanardag R, Bolkent S, et al. Regulation of oxidative stress and somatostatin, cholecystokinin, apelin gene expressions by ghrelin in stomach of newborn diabetic rats. Acta Histochem. 2013;115(7):740-7. doi: 10.1016/j.acthis.2013.03.001.
Esteves-Monteiro M, Ferreira-Duarte M, Vitorino-Oliveira C, Costa-Pires J, Oliveira S, Matafome P, et al. Oxidative Stress and Histomorphometric Remodeling: Two Key Intestinal Features of Type 2 Diabetes in Goto–Kakizaki Rats. Int J Mol Sci. 2024;25(22):12115. doi: 10.3390/ijms252212115.
Yin J, Chen J, Chen JD. Ameliorating effects and mechanisms of electroacupuncture on gastric dysrhythmia, delayed emptying, and impaired accommodation in diabetic rats. Am J Physiol Gastrointest Liver Physiol. 2010;298(4):563-70. doi: 10.1152/ajpgi.00252.2009.
Yarandi SS, Srinivasan S. Diabetic gastrointestinal motility disorders and the role of enteric nervous system: current status and future directions. Neurogastroenterol Motil. 2014;26(5):611-24. doi: 10.1111/nmo.12330.
Abas AS, Sherif MH, Ibrahim S. Effects of Naringin and Zinc Treatment on Biochemical, Molecular, and Histological Alterations in Stomach and Pancreatic Tissues of STZ‐Induced Diabetic Rats. Adv Biol. 2025;9(4):2400688. doi: 10.1002/adbi.202400688.
Demedts I, Masaoka T, Kindt S, De Hertogh G, Geboes K, Farre R, et al. Gastrointestinal motility changes and myenteric plexus alterations in spontaneously diabetic biobreeding rats. J Neurogastroenterol Motil. 2013;19(2):161-70. doi: 10.5056/jnm.2013.19.2.161.
Wei X, Tao J, Xiao S, Jiang S, Shang E, Zhu Z, et al. Xiexin Tang improves the symptom of type 2 diabetic rats by modulation of the gut microbiota. Sci Rep. 2018;8(1):3685. doi: 10.1038/s41598-018-22094-2.
Zhang Q, Yu H, Xiao X, Hu L, Xin F, Yu X. Inulin-type fructan improves diabetic phenotype and gut microbiota profiles in rats. Peer J. 2018;6:e4446. doi: 10.7717/peerj.4446.
Turkyilmaz IB, Bayrak BB, Sacan O, Mutlu O, Akev N, Yanardag R. Zinc supplementation restores altered biochemical parameters in stomach tissue of STZ diabetic rats. Biol Trace Elem Res. 2021;199:2259-65. doi: 10.1007/s12011-020-02352-z.
Yilmaz-Ozden T, Kurt-Sirin O, Tunali S, Akev N, Can A, Yanardag R. Ameliorative effect of vanadium on oxidative stress in stomach tissue of diabetic rats. Bosn J Basic Med Sci. 2014;14(2):105-9. doi: 10.17305/bjbms.2014.2273.
Nwokolo CU, Debnam ES, Booth JD, Sim R, Sankey EA, Dhillon AP, et al. Neuroendocrine changes in rat stomach during experimental diabetes mellitus. Dig Dis Sci. 1992;37(5):751-56. doi: 10.1007/BF01296434.
Fregonesi CE, Miranda-Neto MH, Molinari SL, Zanoni JN. Quantitative study of the myenteric plexus of the stomach of rats with streptozotocin-induced diabetes. Arq Neuropsiquiatr. 2001;59(1):50-3. doi: 10.1590/S0004-282X2001000100011.
Chen XY, Han X, Yu Z, Xu B. Effect of electroacupuncture combined with mosapride on gastric motility in diabetic gastroparesis rats. Zhongguo Zhen Jiu. 2022;42(3):298-302. doi: 10.13703/j.0255-2930.20210212-0001.
Lacy BE, Tack J, Gyawali CP. AGA Clinical practice update on management of medically refractory gastroparesis: expert review. Clin Gastroenterol Hepatol. 2022;20(3):491-500. doi: 10.1016/j.cgh.2021.10.038.
Othman FM, El-Sawi MR, Shabana SM. Stevia extract safeguards rats from diabetic renal injury by mitigating markers of inflammation, oxidative stress, and apoptosis. Toxicology and Environmental Health Sciences. 2023;15(4):351-67. doi: 10.1007/s13530-023-00188-3.
Li L, Wang L, Long R, Song L, Yue R. Prevalence of gastroparesis in diabetic patients: a systematic review and meta-analysis. Sci Rep. 2023;13(1):14015. doi: 10.1038/s41598-023-41112-6.
Lin YY, Tseng TJ, Hsieh YL, Luo KR, Lin WM, Chiang H, et al. Depletion of peptidergic innervation in the gastric mucosa of streptozotocin-induced diabetic rats. Exp Neurol. 2008;213(2):388-96. doi: 10.1016/j.expneurol.2008.07.001.
Doganyigit Z, Yakan B, Soylu M, Kaymak E, Okan A, Silici S. Histological, immunohistochemical and biochemical effects of bee bread on stomach tissue of obese rats. Bratisl Lek Listy. 2020;121(7):504-11. doi: 10.4149/bll_2020_083.
Niu Z, Yan M, Zhao X, Jin H, Gong Y. Effect of hawthorn seed extract on the gastrointestinal function of rats with diabetic gastroparesis. South African journal of botany. 2020;130:448-55. doi: 10.1016/j.sajb.2020.01.032.
Mai W, Fan YS, Miao FR, He C, Huang LL, Zhao XJ, et al. Effect of electroacupuncture combined with Zhuang-medicine-thread moxibustion on silent information regulator-1/nuclear factor κB signaling pathway in gastric antrum of diabetic gastroparesis rats. Zhen Ci Yan Jiu. 2021;46(10):837-44. doi: 10.13702/j.1000-0607.200942.
Lerkdumnernkit N, Sricharoenvej S, Lanlua P, Niyomchan A, Baimai S, Chookliang A, et al. The Effects of Early Diabetes on Duodenal Alterations in the Rats. Int J Morphol. 2022;40(2):389-95.
Schol J, Wauters L, Dickman R, Drug V, Mulak A, Serra J, et al. United European Gastroenterology (UEG) and European Society for Neurogastroenterology and Motility (ESNM) consensus on gastroparesis. United European Gastroenterol J. 2021;9(3):287-306. doi: 10.1002/ueg2.12060.
Lutsyk OD, Chaikovs'kyi YuB, editors. Histolohiia. Tsytolohiia. Embriolohiia [Histology. Cytology. Embryology]. Vinnytsia: Nova knyha; 2018. 592 p. (in Ukrainian).
##submission.downloads##
Опубліковано
Номер
Розділ
Ліцензія
Авторське право (c) 2025 Буковинський медичний вісник

Ця робота ліцензується відповідно до Creative Commons Attribution 4.0 International License.
Автори залишають за собою право на авторство своєї роботи та передають журналу право першої публікації цієї роботи на умовах ліцензії Creative Commons Attribution License, котра дозволяє іншим особам вільно розповсюджувати опубліковану роботу з обов'язковим посиланням на авторів оригінальної роботи та першу публікацію роботи у цьому журналі.
Автори мають право укладати самостійні додаткові угоди щодо неексклюзивного розповсюдження роботи у тому вигляді, в якому вона була опублікована цим журналом (наприклад, розміщувати роботу в електронному сховищі установи або публікувати у складі монографії), за умови збереження посилання на першу публікацію роботи у цьому журналі.
Політика журналу дозволяє і заохочує розміщення авторами в мережі Інтернет (наприклад, у сховищах установ або на особистих веб-сайтах) рукопису роботи, як до подання цього рукопису до редакції, так і під час його редакційного опрацювання, оскільки це сприяє виникненню продуктивної наукової дискусії та позитивно позначається на оперативності та динаміці цитування опублікованої роботи (див. The Effect of Open Access).